Kaltsterilisation mittels Kalkhydrat u. Holzasche !!!!!

Hey Matthias,

klingt ja klasse! Sehr vielversprechend ! Wieviel Brutanteil hast du genommen?

Bei Aloha werden spannenderweise zumindest die
Nebrodensis-Stämme in der Liste der Sorten aufgeführt,
bei denen die Kaltpasteurisation empfohlen werden kann.
Walter sagte neulich, Nebro hätte den Artenrang verloren
und sei nur noch eine var. von Eryngii.

Wir wollen hier befeuchten nach einfacher Methode (Kopfkissen, Baggerstein, Regenfass)
und das Wasser weiterverwenden. Der eventuellen Verschiebung des Ph-Werts
begegnen wir mit weiterer Kalk/Asche/Base -Zugabe.
Ph 11-12 kann mein Gerät noch messen, sollte also klappen.
Wenn das Ganze funzt, bauen wir die Aloha-Sprinkelwanne.
Wir arbeiten aber auch mit selbstgehacktem Ballenstroh wg. Bio

Ey Simple, wir wollen auch einen Versuch mit Kleie machen.
Werden wir aber sicherheitshalber sterilisieren.
Wir haben noch nicht genug Brut, um sofort loszulegen,
aber es kribbelt in den Fingern....

Gruß Ulli

Hi,

wenn du mit Kleiezusatz steriliserst, wo bleibt da das Experiment . Ich habe keinen Erfolgsdruck. Sehe das ganze erstmal unter dem Aspekt Erfahrungen sammeln. Dauert bei mir aber auch noch bisschen bis es losgehen kann.

Grüße
Simple

Ein Substrat aus 80% Holzbrikkets mit 10% Kleie und 10% Hirse unter Zusatz von etwas Gips und viel Calciumhydroxid wird momentan problemlos von einer Auster durchwachsen.
Kann natürlich daran liegen, dass die Auster so schnell ist, aber bisher sieht es gut aus.
Ohne das das Substrat jemals einen DDKT von innen gesehen hätte

Ich wage aber trotzdem zu bezweifeln, dass Kleie mit Calciumhydroxid bei langsamer wachsenden Arten ebenfalls funktionieren würde.

Hallo Ulli
So in etwa auf 4,5Kg fertigen Substrat 500ml Brut. Wären mir auch zu viel Beutel geworden hätte ich die doppelte Menge angesetzt, da ich insgesamt 30 Gläser mit Brut zu verarbeiten hatte. :side:
Ich warte erst mal ab wie sich die Beutel entwickeln, wenn es gut funzt überlege ich mir auch eine neue Taktik zum einweichen oder ihr bringt eine Idee ins Spiel.
Jedenfalls so wie ich es machte ist es Sinnlos Holz oder gar Kleie einzuweichen das wird nur ein Schlamm den man nicht ausdrücken kann. Dann eher die Wassermenge+Kalk+Asche so runterrechnen das man ein verhältnis von Trockensubstrat und Wasser von 1 zu 1,5 hat ob das natürlich dann noch genau so geht müsste man in einen klein Versuch testen????

Übrigens ist dein kleingeschnittenes Stroh eine bessere Alternative zu Strohpeletts, durch die Strohschnipsel hat man eine Bessere Belüftung im Substrat was natürlich das Mycel anregt schneller einzuwachsen als die bei Strohpeletts der Fall ist.

Ich schreibe mal so Pleurotus eryngii ist nur ein großer Sammelbegiff es gibt vom KS so viele Farianten das wohl nur die mit weißen Hüten bei den Züchtern ein Synonym erhalten, nebrodensis und feruale halt. Zum fruchten habe ich beide noch nicht gebracht vor allen waren die letzten Versuche nur auf pasteurisierten Substrat.
Bei Aloha ließt man nur grobe Richtlinien was das Substrat angeht, da geht es mehr darum die jeweiligen Kulturen anzubieten.
Gruß Matthias

Hallo Leute
Nun sind 2 Beutel vollständig durchwachsen, 1x Taubenblauer + 1x Rillstieliger Seitling (nicht Limone!)
Beim 3 Beutel ist mir ein Fehler unterlaufen ich habe ihn vergessen zu Löchern und das Mycel hat so kein Sauerstoff bekommen, peinlich aber ich bin ja ehrlich :blush:
Gruß Matthias

Pilzonkel schrieb: Beim 3 Beutel ist mir ein Fehler unterlaufen ich habe ihn vergessen zu Löchern und das Mycel hat so kein Sauerstoff bekommen, peinlich aber ich bin ja ehrlich :blush:
Gruß Matthias

Hi Matthias ,

nur wer arbeitet macht auch Fehler u. Größe erlangt man , wenn man diese auch eingesteht !

LG
Walter

PS:

Sieht so aus als hätte die kalte Sterilisation eine Zukunft ! :woohoo: